Entomofauna edáfica associada ao cultivo de algodão transgênico no cone sul de Rondônia

Autores

  • Lucas Henrique Machado Cardoso Instituto Federal de Rondônia/IFRO, Campus Colorado do Oeste. BR 435, km 63 (antiga RO 399, KM 05), Zona Rural, Caixa Postal 51, Colorado do Oeste, Rondônia/RO. Brasil. Cep: 76.993-0000.
  • Aline Fonseca do Nascimento Instituto Federal de Rondônia/IFRO, Campus Colorado do Oeste. BR 435, km 63 (antiga RO 399, KM 05), Zona Rural, Caixa Postal 51, Colorado do Oeste, Rondônia/RO. Brasil. Cep: 76.993-0000.
  • Herica Martinho Silveira Instituto Federal de Rondônia/IFRO, Campus Colorado do Oeste. BR 435, km 63 (antiga RO 399, KM 05), Zona Rural, Caixa Postal 51, Colorado do Oeste, Rondônia/RO. Brasil. Cep: 76.993-0000.
  • Eduardo Oliveira Instituto Federal de Rondônia/IFRO, Campus Colorado do Oeste. BR 435, km 63 (antiga RO 399, KM 05), Zona Rural, Caixa Postal 51, Colorado do Oeste, Rondônia/RO. Brasil. Cep: 76.993-0000.
  • Leidiane Budach Silva Franco Instituto Federal de Rondônia/IFRO, Campus Colorado do Oeste. BR 435, km 63 (antiga RO 399, KM 05), Zona Rural, Caixa Postal 51, Colorado do Oeste, Rondônia/RO. Brasil. Cep: 76.993-0000.

DOI:

https://doi.org/10.37002/biodiversidadebrasileira.v14i1.2422

Palavras-chave:

Organismo geneticamente modificado , Insecta , Gossypium , inimigos naturais , praga

Resumo

 O estado de Rondônia estava incluído nas zonas de exclusão para o plantio do algodão geneticamente modificado. Essas áreas foram instituídas em 2005, pela Comissão Técnica Nacional de Biossegurança (CTNBio), com o objetivo de preservar a variabilidade de algodoeiros não cultivados (nativos e naturalizados) de eventuais efeitos adversos decorrentes do fluxo gênico com algodoeiros geneticamente modificados. No entanto, os insetos endêmicos da região, pragas e inimigos naturais, associados ao algodoeiro geneticamente modificado, não foram levantados. Tais informações são fundamentais para a atualização de programas de manejo integrado de pragas. Desse modo, o objetivo do presente estudo foi avaliar a entomofauna associada à cultura do algodoeiro geneticamente modificado na região do Cone Sul de Rondônia, tendo como enfoque as áreas plantadas na cidade de Vilhena, auxiliando na elaboração do manejo integrado de pragas na região. Foi possível observar que a maioria dos insetos encontrados nas amostras constituem-se de inimigos naturais de pragas agrícolas ou mesmo recicladores de matéria orgânica. Tesourinhas (Labiduridae), moscas (Muscidae), abelhas (Apidae), besouros (Carabidae), moscas de carne (Sarcophagidae) e formigas (Formicidae) foram os insetos mais representativos encontrados. Observou-se que a maioria dos insetos encontrados são benéficos para o solo e para cultura, sendo importante buscar meios de controles de pragas que sejam seletivos, com o intuito de preservar essa entomofauna encontrada.

Referências

Lunardon MT. Análise da conjuntura agropecuária: Safra 2007/08 [Internet]. Paraná: Departamento de Economia Rural, Secretaria da Agricultura e do Abastecimento; 2007 [citado em 2021 nov 11]. Disponível em: https://www.agricultura.pr.gov.br/arquivos/File/deral/Progno.

Zeferino AD, Ramos TS. Análise da Competitividade das Exportações Brasileiras de Algodão. Nova Economia, v. 32, n. 2, p. 507-528, 2022.

Camargo FP de et al. Previsões e Estimativas das Safras Agrícolas do Estado de São Paulo, Ano Agrícola 2021/22, Abril de 2022 [Internet]. Análises e Indicadores do Agronegócio. 2022 jun [citado em 2022 jul 19];17(6):1-16. Disponível em: http://www.iea.agricultura.sp.gov.br/ftpiea/AIA/AIA-34-2022.pdf.

Ribeiro IG, Marin VA. A falta de informação sobre os Organismos Geneticamente Modificados no Brasil. Ciênc Saúde Coletiva. 2012;17:359-368.

Embrapa. Controle Biológico e o Manejo de Pragas do Algodoeiro [Internet]. Campina Grande: Embrapa Algodão; 2005 [citado em 2021 nov 10]. Disponível em: https://www.infoteca.cnptia.embrapa.br/bitstream/doc/278333/1/CIRTEC72.pdf

Embrapa. Plantio de algodão GM em Rondônia é liberado [Internet]. Embrapa; 2018 [citado em 2022 set 26]. Disponível em: https://www.embrapa.br/busca-de-noticias/-/noticia/36106351/plantio-de-algodao-gm-em-rondonia-e-liberado.

Bacon VA. Rondônia se destaca internacionalmente na produção e exportação de algodão [Internet]. Secretaria de Estado da Agricultura; 2019 [acesso em 01 fev 2020]. Disponível em: https://www.agricultura.ro.gov.br/rondonia-se-destaca-internacionalmente-na-producao-e-exportacao-de-algodao/.

Garlet J. Levantamento Populacional da entomofauna em plantios de Eucalyptus spp. [dissertação]. Santa Maria (RS, Brasil); 2010.

Köppen W, Geiger R. Das geographische System der Klimate. In: Handbuch der Klimatologie. v.1, 1-44, part C. Berlim: Gebru¨der Borntra¨ger; 1936.

Marchiori CH. Study of the community of flies at different altitudes in the Serra da Caldas Novas Park, Goiás, Brazil. Braz J Biol. 2007;67:271-272.

Triplehorn, C. A.; Johnson, N. F. 2013. Estudo dos insetos _ tradução da 7ª edição de borror and delong's introduction to the study of insects. São Paulo, Cengage Learning, 809 p.

Silveira Neto S, Nakano O, Barbin D, Villa Nova NA, Lacava PM, Do Amaral AM. Manual De Ecologia Dos Insetos. São Paulo: Agronômica Ceres; 1976.

Shannon CE, Weaver W. The mathematical theory of communication. Urbana: University of Illinois Press; 1949.

Sakagami SF, Laroca S. Relative abundance, phenology and flower visits of apid bees in Eastern Paraná. South Brazil (Hym., APIDAE). Kontyü. 1971; 39:213-230.

Thomazini MJ, Werckmeister T, Ariane B. Levantamento de insetos e análise entomofaunística em floresta, capoeira e pastagem no sudeste acreano. Rio Branco: Embrapa Acre; 2002.

Almeida MVR, Oliveira TS, Bezerra AME. Biodiversidade em sistemas agroecológicos no município de Choró, CE, Brasil. Ciênc Rural. 2009; 39(4):1080-1087.

Azevedo FR, Moura MAR, Arrais MSB, Nere DR. Composição da entomofauna da Floresta Nacional do Araripe em diferentes vegetações e estações do ano. Rev Ceres. 2011; 58(6):740-8.

Lawrence FA, Hasting AM, Dallwitz MJ, Paine TA, Zurcher EJ. Beetles of the world. A key and information system for families and subfamilies. Version 1.0 for MS –Windows [CD-ROM]. Melbourne: CSIRO Publishing; 1999.

Santos RS, Jelìnek J, Andrade Neto R de C. Record of Conotelus luteicornis Erichson (Coleoptera: Nitidulidae) in passion fruit vine in Acre state, Brazil. Rev Ceres. 2021;68(4):368-370.

Ribeiro P de A. Ecologia do bicudo-do-algodoeiro Anthonomus grandis Boheman, 1843 (Coleoptera: Curculionidae) no Cerrado do Brasil Central. Brasília: DF; 2007.

Fernandes FSAPB, Battel VW, Botteon AC. Comportamento predatório de Euborellia annulipes (Dermaptera : Anisolabididae) sob mediação de Harmonia axyridis (Coleoptera : Coccinelidae). In: Anais do 13° Simpósio de Controle Biológico; 2013; Bonito. p. 52.

Koppenhöfer AM, KVS, Reddy GM, Lubega MC. Predators of the banana weevil, Cosmopolites sordidus (Germar) (Col., Curculionidae) in western Kenya. J Appl Entomol. 1992; 114: 530-533.

Stork NE, Eggleton P. Invertebrates as determinants and indicators of soil quality. Am J Alternative Agr. 1992; 7(1/2):38-47.

Kromp B. Carabid beetles in sustainable agriculture: a review on pest control efficacy cultivation impacts and enhancement. Agr Ecosyst Environ. 1999;74(1/3):187-228.

Brown BV, Borkent A, Cumming JM, Wood DM, Woodley NE, Zumbado MA, editors. Manual of Central American Diptera. Ottawa: NRC Research Press; 2010. p.728.

Rocha UR, Mendes J. Pupation of Dermatobia hominis (L. Jr., 1781) (Diptera: Cuterebridae) associated with Sarcodexia lambens (Wiedemann, 1830) (Diptera: Sarcophagidae). Mem Inst Oswaldo Cruz. 1996; 91(3):299-300.

Oliveira LJ, Santos B, Parra JRP, Hoffmann-Campo CB. Coró-Dasoja. In: Salvadori JR, Ávila CJ, Silva MTB, editors. Pragas de solo no Brasil. Passo Fundo: Embrapa Trigo; Dourados: Embrapa Agropecuária Oeste; Cruz Alta: Fundacep Fecotrigo; 2004. p. 167-190.

Rodrigues SR, Carmo JI, Oliveira VS, Tiago EF, Taira TL. Ocorrência de larvas de Scarabaeidae fitófagos (Insecta: Coleoptera) em diferentes sistemas de sucessão de culturas. Pesq Agropec Trop. 2011; 41(1):87-93.

Matta DH, Cividanes F, Robson J. Diversidade De Orthoptera (Arthropoda: Insecta) Em Algodoeiro Colorido [Internet]. Ribeirão Preto. SP; 2015. Disponível em: http://www.infobibos.com/Agroenergia/CD_2015/Resumos/ResumoAgroenergia_2015_032.pdf.

Stadler T, Buteler M. Migration and dispersal of Anthonomus grandis (Coleoptera: Curculionidae) in South America. Rev Soc Entomol Argent. 2007;66(3-4):205-217.

Pires VC, Silveira FA, Sujii ER, Torezani KRS, Rodrigues WA, Albuquerque FA, Rodrigues SMM, Salomão AA, Pires CSS. Importance of bee pollination for cotton production in conventional and organic farms in Brazil. J Pollinat Ecol. 2014;13(16):151-160.

Altieri MA. Biodiversity and pest management in agroecosystems. New York: Food Products Press; 1994.

Tscharntke T, Klein AM, Kruess A, Steffan-Dewenter I, Thies C. Landscape perspectives on agricultural intensification and biodiversity–ecosystem service management. Ecol Lett. 2005; 8(8):857-874.

Kremen C, Iles A, Bacon C. Diversified farming systems: An agroecological, systems-based alternative to modern industrial agriculture. Ecol Soc. 2002;17(4):44.

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Publicado

25/03/2024

Edição

Seção

Fluxo contínuo