Potencial del Uso de Muestras Fecales de Felinos como Herramienta de Monitoreo Ambiental: Estudio de Caso en el Parque Nacional Serra dos Órgãos

Autores/as

  • Cecília Cronemberger de Faria ICMBio/Parque Nacional da Serra dos Órgãos e Universidade do Estado do Rio de Janeiro/UERJ, Programa de Pós-Graduação em Meio Ambiente/PPGMA
  • Rafael Conceição de Moura 2 Bioconservation, Brasil.
  • Marina Lopes Duarte Fundação Oswaldo Cruz/FIOCRUZ, Instituto Oswaldo Cruz/IOC, Laboratório de Entomologia Médica e Forense e Fundação Oswaldo Cruz/FIOCRUZ, Instituto Oswaldo Cruz/IOC, Programa de Pós-Graduação em Biodiversidade e Saúde/PG
  • Lais Verdan Dib Instituto Oswaldo Cruz/Fiocruz, Laboratório de Toxoplasmose e Outras Protozooses do Rio de Janeiro,
  • Alynne da Silva Barbosa Instituto Oswaldo Cruz/Fiocruz, Laboratório de Toxoplasmose e Outras Protozooses do Rio de Janeiro, e Universidade Federal Fluminense/ UFF, Instituto Biomédico, Departamento de Microbiologia e Parasitologia
  • Leticia Oliveira Instituto Federal de Educação Ciência e Tecnologia/IFRJ. Campus Rio de Janeiro
  • Roberta Loh Instituto Federal de Educação Ciência e Tecnologia/IFRJ. Campus Rio de Janeiro
  • Maria Regina Reis Amendoeira Instituto Oswaldo Cruz/Fiocruz, Laboratório de Toxoplasmose e Outras Protozooses do Rio de Janeiro
  • Helena Godoy Bergallo Universidade do Estado do Rio de Janeiro/UERJ, Departamento de Ecologia

DOI:

https://doi.org/10.37002/biodiversidadebrasileira.v12i1.1773

Palabras clave:

Tricología, heces, Felidae

Resumen

El monitoreo de las Areas Protegidas (AP) es esencial para evaluar si logran sus objetivos.
Los felinos son buenos indicadores ambientales y sus heces pueden proporcionar información
relevante para monitorear las AP. Usamos heces encontradas en senderos en el Parque Nacional
Serra dos Órgãos para registrar la presencia de felinos y otros mamíferos, analizar su distribución
espacial y discutir el potencial de usar estas muestras como una herramienta de monitoreo ambiental.
Entre 2009 y 2019, se recolectaron 486 muestras en 21 senderos. Fue posible identificar un mamífero
en 61% de las 315 muestras analizadas por microscopía óptica de pelos de guardia. Se registraron
las cinco especies de felinos con presencia confirmada en el parque, con énfasis en el margay
(Leopardus wiedii), frecuentemente registrado en altitudes superiores a las conocidas anteriormente.
Se han identificado mamíferos con pocos registros previos en el parque, como el mapache cangrejero
(Procyon cancrívoro). La distribución espacial de las muestras refleja la altimetría del área muestreada,
con una concentración en los “campos de altitud”, donde otros métodos han demostrado ser menos
efectivos en el registro de mamíferos, destacando la importancia de utilizar métodos de monitoreo
complementarios. Las heces se pueden utilizar en análisis moleculares que, además de refinar la
identificación taxonómica, pueden revelar información como el grado de aislamiento genético de las
poblaciones. Las heces pueden proporcionar información sobre la salud animal mediante el estudio
de los parásitos gastrointestinales, que también son buenos indicadores de la calidad ambiental, y
sobre la contaminación ambiental. A pesar de su potencial, el uso de heces felinas como herramienta
de monitoreo sigue siendo poco común.

Citas

Abrams JF et al. Studying terrestrial mammals in tropical rainforests. A user guide for camera-trapping and environmental DNA. Leibniz-IZW, Berlin, Germany. 2018.

AFC DAAC, 2014. Imagem ALOS PALSAR , L-Band, Cena ALPSRP269566730. Includes Material © JAXA/METI 2008. DOI: https://doi.org/10.5067/ Z97HFCNKR6VA

Ahumada JA et al. Community structure and diversity of tropical forest mammals: Data from a global camera trap network. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences, 366(1578): 2703-2711, 2011.

Alberts CC, Saranholi BH, Frei F & Galetti PM. Comparing hair-morphology and molecular methods to identify fecal samples from Neotropical felids. PLoS One, 12: 1-24, 2017

Aximoff I, Cronemberger C & Pereira FA. Amostragem de longa duração por armadilhas fotográficas dos mamíferos terrestres em dois parques nacionais no estado do Rio de Janeiro. Oecologia Australis, 19(1): 215-231, 2015.

Bianchi RC, Rosa AF, Gatti Av & Mendes SL. Diet of margay, Leopardus wiedii, and jaguarundi, Puma yagouaroundi, (Carnivora: Felidae) in Atlantic Rainforest, Brazil. Zoologia, 28(1): 127-132, 2011

Bianchi RC, Olifiers N, Gomper ME & Mourão G. Niche partitioning among mesocarnivores in a Brazilian wetland. PLoS ONE 11(9): e0162893. doi:10.1371/ journal.pone.0162893, 2016.

Bruner AG et al. Effectiveness of Parks in Protecting Tropical Biodiversity. Science, 125(5501): 125-128, 2001. Carvalho GO et al. Road-killed giant anteater’s fur as a tool for biomonitoring mercury contamination. Chemosphere. DOI: 10.1016/j. chemosphere.2020.128644. 2020.

Chame M. Terrestrial Mammal Feces: A Morphometric Summary and Description. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, 98: 71-94, 2003.

Cronemberger C et al. 2019. Mamíferos do Parque Nacional da Serra dos Órgãos: Atualização da lista de espécies e implicações para a conservação. Oecologia Australis, 23: 191-214, 2019.

Cronemberger C & Viveiros de Castro EB. Ciência e Conservação na Serra dos Órgãos. Brasília: IBAMA. 296p. 2007.

Cullen Jr L, Abreu CK, Sana D & Nava AFD. As onçaspintadas como detetives da paisagem no corredor do Alto Paraná, Brasil Natureza e Conservação 3: 43-58, 2005.

Cunha AA. Alterações na composição da comunidade e o status de conservação dos mamíferos de médio e grande porte da Serra dos Órgãos. In: Cronemberger C, Viveiros de Castro EB. Ciência e Conservação na Serra dos Órgãos. Brasília: IBAMA: 211-224, 2007.

Davis DE. The Annual Cycle of Plants, Mosquitoes, Birds, and Mammals in Two Brazilian Forests. Ecological Monographs, 15(3), 243-295, 1945. Dib LV et al. Gastrointestinal parasites among felids inhabiting the Serra dos Órgãos National Park, Rio de Janeiro, Brazil. Revista Brasileira de Parasitologia, 27(2): 131-140, 2018.

Dib LV et al. Noninvasive Sampling: Monitoring of Wild Carnivores and Their Parasites, p. 1-13. In: Ahmad NB, Mohd NS. (orgs). Protected Areas, National Parks and Sustainable Future. Londres: IntechOpen. 570p. 2019.

Dib LV et al. Noninvasive fecal sampling in Itatiaia National Park, Brazil: wild mammal identification and parasite detection. Dryad. 2: Dataset, 2020.

Di Bitetti MS, De Angelo CD, Di Blanco YE & Paviolo A. Niche partitioning and species coexistence in a Neotropical felid assemblage. ActaOecologica, 36: 403- 412, 2010.

Elbroch LM, Quigley HB & Caragiulo A. Spatial associations in a solitary predator: using genetic tools and GPS technology to assess cougar social organization in the Southern Yellowstone Ecosystem. Acta Ethologica, 18: 127-136, 2015.

Espinosa CC et al. Geographic distribution modeling of the margay (Leopardus wiedii) and jaguarundi (Puma yagouaroundi): a comparative assessm ent. Journal of Mammalogy, 99(1): 252-262, 2018.

ESRI. ArcGIS Pro: Release 2.6.3. Redlands, CA: Environmental Systems Research Institute. 2020.

Farrell LE, Roman J & Sunquist ME. Dietary separation of sympatric carnivores identified by molecular analysis of scats. Molecular Ecology, 9(10): 1583-1590, 2000.

Fontes BL et al. The local extinction of one of the greatest terrestrial ecosystem engineers, the giant armadillo (Priodontes maximus), in one of its last refuges in the Atlantic Forest, will be felt by a large vertebrate community. Global Ecology and Conservation, 24, e01357, 2020.

Galindo-Leal C, Câmara IG & Reis E. Mata Atlântica: Biodiversidade, ameaças e perspectivas. São Paulo: Fundação SOS Mata Atlântica. Belo Horizonte: Conservação Internacional. 472 p. 2005.

Galleti M et al. Atlantic Rainforest’s Jaguars in Decline. Science, 342(6161): 930, 2013. Haag T et al. The effect of habitat fragmentation on the genetic structure of a top predator: loss of diversity and high differentiation among remnant populations of Atlantic Forest jaguars (Panthera onca). Molecular Ecology, 19: 4906-4921, 2010.

Harmsen BJ, Foster RJ, Silver S, Ostro L & Doncaster CP. Differential use of trails by forest mammals and the implications for camera-trap studies: A case study from Belize. Biotropica, 42: 126-133, 2010.

Jorge MLSP, Galetti PM, Ribeiro MC & Ferraz KMPMB. Mammal defaunation as surrogate of trophic cascades in a biodiversity hotspot. Biological Conservation, 163: 49-57, 2013

Lindenmayer DB & Likens GE. Adaptive monitoring: a new paradigm for long-term research and monitoring. Trends in Ecology and Evolution, 24(9): 482-486, 2009.

Lopes MCB et al. Total mercury in wild felids occurring in protected areas in the central Brazilian Amazon. Acta Amazonica, 50: 142-148, 2020.

Lovett GM et al. Who needs environmental monitoring? In a nutshell. The Ecological Society of America, 5(5): 253-260, 2007.

Lucena FM. Pequenos mamíferos como biomonitores da contaminação por mercúrio em duas unidades de conservação montanas (SE-Brasil). Trabalho de conclusão de curso (graduação). Universidade Federal do Rio de Janeiro. 54 p. 2018.

McDonald RI & Boucher TM. Global development and the future of the protected area strategy. Biological Conservation, 144(1): 383–392, 2011.

Miranda GHB, Rodrigues FHG & Paglia AP. Guia de Identificação de Pelos de Mamíferos Brasileiros. Brasília: Ciências Forenses. 112 p. 2014.

Miotto R A et al. Genetic diversity and population structure of pumas (Puma concolor) in southeastern Brazil: Implications for conservation in a humandominated landscape. Conservation Genetics, 12(6): 1447-1455, 2011.

Miotto RA, Cervini M, Kajin M, Begotti RA & Galetti PM. Estimating puma Puma concolor population size in a human-disturbed landscape in Brazil, using DNA mark–recapture data. Fauna e Flora International, 48(2): 250-257, 2014.

Morrison JC et al. Persistence of large mammal faunas as indicators of global human impacts. Journal of Mammalogy, 88(6): 1363-1380, 2011.

Moura RC &, Faria CC. Protocolo de coleta de amostras fecais de mamíferos terrestres da Ordem Carnivora para estudos de dieta. Boletim da Sociedade Brasileira de Mastozoologia, 64: 22-24, 2012a.

Moura RC & Faria CC. Coleção de Referência de pelos de Mamíferos do PARNA Serra dos Órgãos. In: Anais do Simpósio Latinoamericano de Coleções Biológicas e Biodiversidade: Conhecimento e Gestão. 97 p. 2012b.

Nagy-Reis M. et al. Neotropical Carnivores: a dataset of occurrence of carnivores in the Neotropics. Ecology 101 (11), e03128. 2020.

Oliveira TG, Almeida LB, Tortato MA & Beisiegel BM. Avaliação do risco de extinção do gatomaracajá Leopardus wiedii (Schinz, 1821) no Brasil. Biodiversidade Brasileira, 31(1), 76-83, 2013.

Oliveira TG et al. Leopardus wiedii. The IUCN Red List of Threatened Species 2015: e.T11511A50654216. 2015 Pilgrim KL, MCkelvey KS, Riddle AE & Schwartz MK. Felid sex identication based on noninvasive genetic samples. Molecular Ecology Notes, 5: 60-61, 2005.

Quadros J. 2002. Identificação microscópica de pêlos de mamíferos brasileiros e sua aplicação no estudo da dieta de carnívoros. Tese (Doutorado em Ciências – Zoologia). Universidade Federal do Paraná. 127 p.

Quadros J & Monteiro-filho ELA. Coleta e preparação de pelos de mamíferos para identificação em microscopia óptica. Revista Brasileira de Zoologia. 23: 274-278, 2006a.

Quadros J & Monteiro-Filho ELA. Revisão conceitual, padrões microestruturais e proposta nomenclatória para os pêlos-guarda de mamíferos brasileiros. Revista Brasileira de Zoologia, 23: 279-292, 2006b.

Rocha-Mendes F, Mikich SB, Quadros J & Pedro WA. Feeding ecology of carnivores (Mammalia, Carnivora) in Atlantic Forest remnants, Southern Brazil. Biota Neotropical. 10: 21-30, 2010.

Rodríguez-Castro KG, Saranholi BH, Bataglia L, Blanck DV & Galetti Jr, PM. Molecular species identification of scat samples of South American felids and canids. Conservation Genetics Resources, 1-6, 2020.

RStudio Team. RStudio: Integrated Development for R. RStudio, PBC, Boston, MA , 2020.

Sanchez-Barradas A & Villalobos F. Species geographical co-occurrence and the effect of Grinnellian and Eltonian niche partitioning: The case of a Neotropical felid assemblage. Ecological Research, 2020: 1–12, 2020.

Santos J, Paschoal A, Massara R & Chiarello A. High consumption of primates by pumas and ocelots in a remnant of the Brazilian Atlantic Forest. Brazilian Journal of Biology. 74: 632-641, 2014.

Saranholi BH, Chávez-Congrains K & Galetti PM. Evidence of Recent Fine-Scale Population Structuring in South American Puma concolor. Diversity, 9: 1-11, 2017.

Sunquist M & Sunquist F. Wild Cats Of The World. University of Chicago Press, Chicago. 462 p. 2002.

Tomas WM, Rodrigues FHG & Fusco R. Técnicas de levantamento e monitoração de populações de carnívoros. Corumbá: Embrapa Pantanal, 34 p. 2004.

Wang E. Diets of Ocelots (Leopardus pardalis), Margays (L. wiedii), and Oncillas (L. tigrinus) in the Atlantic Rainforest in Southeast Brazil, Studies on Neotropical Fauna and Environment, 37(3): 207-212, 2002.

Wearn OR & Glover-Kapfer P. Camera-trapping for conservation: a guide to best-practices. WWF Conservation Technology Series. 1: 1-180, 2017.

Publicado

18/01/2022

Número

Sección

Programa Institucional de Bolsas de Iniciação Científica – Pibic/ICMBio