Proteínas en frijoles criollos de Juruá, Acre
DOI:
https://doi.org/10.37002/biodiversidadebrasileira.v15i4.2729Palabras clave:
Amazonia , frijoles tradicionales , Phaseolus vulgaris , Vigna unguiculataResumen
En Brasil, el frijol es la principal leguminosa proveedora de proteínas. El estado de Acre se destaca por la gran cantidad de variedades de frijoles cultivados por agricultores familiares. En este contexto, el objetivo del trabajo fue analizar el contenido de proteínas en variedades de frijoles criollos provenientes de la región del Juruá, Acre. Para la investigación, se recolectaron variedades de frijol común y frijol caupí en el municipio de Marechal Thaumaturgo durante los años 2020 y 2021. Las variedades de frijol común estudiadas fueron: Enxofre, Peruano Amarillo, Peruano Rojo, Preto de Arraque, Gurgutuba Rojo y Gurgutuba Blanco; y las de frijol caupí: Manteiguinha Blanco, Costela de Vaca, Quarentão, Corujinha Negro, Manteiguinha Morado, Arigozinho, Preto de Praia y Corujinha Rojo. La investigación concluyó que todas las variedades de frijoles del Juruá son ricas en proteínas, destacándose las variedades de frijol caupí Manteiguinha Blanco (27,82 g·100⁻¹), Costela de Vaca (27,04 g·100⁻¹) y Corujinha Negro (27,13 g·100⁻¹). Las variedades de frijol común Gurgutuba Blanco (26,45 g·100⁻¹), Peruano Amarillo (23,63 g·100⁻¹) y Gurgutuba Rojo (24,28 g·100⁻¹) presentaron los mayores contenidos de proteína dentro de este grupo. El contenido proteico fue superior en las variedades de frijol caupí de coloración clara, comportamiento que no se repitió en el frijol común.
Descargas
Citas
1. Burato JS. Teores de minerais e proteínas e grãos de feijão e estimativas de parâmetros genéticos [tese]. Lavras: UFLA; 2012. 148 f.
2. Durigan JF, Sgarbieri VC, Bulisani EA. Protein value of dry bean cultivars: factors interfering with biological utilization. J Agric Food Chem. 1987; 35(2): 694-704. doi:10.1021/jf00077a014. DOI: https://doi.org/10.1021/jf00077a014
3. Madhujith T, Shahidi P. Antioxidant potential of pea beans (Phaseolus vulgaris L.). J Food Sci. 2005; 70(1): 85-90. doi:10.1111/j.1365-2621.2005.tb09071.x. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.2005.tb09071.x
4. Aparicio-Fernandez X, Manzo-Bonilla L, Loarca-Piña G. Comparison of antimutagenic activity of phenolic compounds in newly harvested and stored common beans (Phaseolus vulgaris) against aflatoxin B1. J Food Sci. 2005; 71(1): 73-8. doi:10.1111/j.1365-2621.2005.tb09068.x. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.2005.tb09068.x
5. Madrera RR, Negrillo AC, Vallés BS, Fernández JJF. Characterization of extractable phenolic profile of common bean seeds (Phaseolus vulgaris L.) in a Spanish diversity panel. Food Res Int. 2020; 138: 109713. doi:10.1016/j.foodres.2020.109713. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodres.2020.109713
6. Geil PB, Anderson JW. Nutrition and health implications of dry beans: a review. J Am Coll Nutr. 1994; 13(6): 549-558. doi:10.1080/07315724.1994.10718446. DOI: https://doi.org/10.1080/07315724.1994.10718446
7. Carbas B, Machado N, Oppolzer D. Nutrients, antinutrients, phenolic composition, and antioxidant activity of common bean cultivars and their potential for food applications. Antioxidants. 2020; 9: 1-18. doi:10.3390/antiox9020186. DOI: https://doi.org/10.3390/antiox9020186
8. Chiaradia ACN, Gomes JC. Feijão: química, nutrição e tecnologia. Viçosa: Fundação Arthur Bernardes; 1997.
9. Fonseca MMF, Bora PS. Composición química y análisis de aminoácidos de alubias. Cienc Tecnol Aliment. 2000; 2(5): 248-255. [acesso em: 28 jan. 2024]. Disponível em: https://www.redalyc.org/pdf/724/72420506.
10. Del Pino VH, Lajolo FM. Efecto inhibitorio de los taninos del frijol carioca (Phaseolus vulgaris L.) sobre la digestibilidad de la faseolina por dos sistemas multienzimáticos. Cienc Tecnol Aliment. 2003; 23(1): 49-55. doi:10.1590/S0101-20612003000100011. DOI: https://doi.org/10.1590/S0101-20612003000100011
11. Mojica L, Luna-Vital D, González de Mejía E. Characterization of peptides from common bean protein isolates and their potential to inhibit markers of type-2 diabetes, hypertension and oxidative stress. J Sci Food Agric. 2017; 97: 2401-10. DOI: https://doi.org/10.1002/jsfa.8053
12. Garcia BF. Peptídeos bioativos do feijão com potencial para diminuir o risco de doenças crônicas não transmissíveis [dissertação]. Londrina: UEL; 2024.
13. Garcés-Rimón M, Morales D, Miguel-Castro M. Potential role of bioactive proteins and peptides derived from legumes towards metabolic syndrome. Nutrients. 2022; 14: 5271. doi:10.3390/nu14245271. DOI: https://doi.org/10.3390/nu14245271
14. Ferreira CM, Del Peloso MJ, Faria LC. Sistemas de produção. Santo Antônio de Goiás: Embrapa Arroz e Feijão; 2003.
15. Lima MO, Gomes FA, Mattar EPL, Ribeiro OAS, Ferreira JB. Aspectos nutricionais de feijões crioulos cultivados na Amazônia Ocidental, Acre, Brasil. Enciclopédia Biosfera [Internet]. 2014; 10(19): 163-173. Disponível em: https://www.conhecer.org.br/enciclop/2014b/AGRARIAS/aspectos%20nutricionais.pdf
16. Gomes FA, Lima MO, Mattar EPL, Ferreira JB, Vale MAD. Aspectos nutritivos de feijões crioulos cultivados no Vale do Juruá, Acre, Brasil. Enciclopédia Biosfera [Internet]. 2012; 8(14): 85-94. Disponível em: https://www.conhecer.org.br/enciclop/2012b/
17. Brasil. Agência Nacional de Vigilância Sanitária (ANVISA). Resolução RDC nº 360, de 23 de dezembro de 2003. Aprova o Regulamento Técnico sobre Rotulagem Nutricional de Alimentos Embalados [Internet]. 30 jan [acesso em: 30 jan. 2024]. Disponível em: http://portal.anvisa.gov.br/.../res0360_23_12_2003.pdf.
18. Kruif CG, Holt C. Casein micelle structure, functions and interactions. In: Fox PF, McSweeney PLH, editores. Advanced dairy chemistry. New York: Kluwer Academic/Plenum Publishers; 2003. DOI: https://doi.org/10.1007/978-1-4419-8602-3_5
19. Instituto Adolfo Lutz. Métodos físico-químicos para análise de alimentos. 4ª ed. São Paulo: Instituto Adolfo Lutz; 2008. Cap. 4: Procedimentos e determinações gerais.
20. NEPA – UNICAMP. TACO – Tabela Brasileira de Composição de Alimentos. 4ª ed. rev. e ampl. Campinas: NEPA–UNICAMP; 2014.
21. Lima SLS. Feijão comum (Phaseolus vulgaris L.): ação do armazenamento sobre a composição química e nutricional e efeito in vivo da farinha integral e de seu hidrolisado proteico no estresse oxidativo e na inflamação [tese]. Viçosa (MG): UFV; 2017. 148 f.
22. De la Barca AMC, Martínez-Díaz G, Ibarra-Pastrana ÉN, Devi S, Kurpad AV, Valencia ME. Pinto bean amino acid digestibility and score in a Mexican dish with corn tortilla and guacamole, evaluated in adults using a dual-tracer isotopic method. J Nutr. 2021; 151(10): 3151-7. doi:10.1093/jn/nxab216. DOI: https://doi.org/10.1093/jn/nxab216
23. Santalla M, Sevillano MCM, Monteagudo AB, Ron AM. Genetic diversity of Argentinean common bean and its evolution during domestication. Euphytica. 2004; 135(1): 75-83. doi:10.1023/B:EUPH.0000009543.46471.72. DOI: https://doi.org/10.1023/B:EUPH.0000009543.46471.72
24. Sathe SK. Dry bean protein functionality. Crit Rev Biotechnol. 2002; 22(2): 175-223. doi:10.1080/07388550290789487. DOI: https://doi.org/10.1080/07388550290789487
25. Soares Júnior MS, Caliari M, Bassinello PZ, Fernandes PM, Becker FS. Características físicas, químicas e sensoriais de feijões crioulos orgânicos cultivados na região de Goiânia-GO. Rev Verde Agroecol Desenvolv Sustent. 2012; 7(3): 109-120.
26. Vieira EHN, Yokoyama M. Colheita, processamento e armazenamento. In: Vieira EHN, Rava CA, editores. Sementes de feijão – Produção e tecnologia. Santo Antônio de Goiás: Embrapa Arroz e Feijão; 2000.
27. Mattar EPL, Oliveira E, Jesus JCS, Araújo ML, Siviero A, Santos Júnior HC. Creole beans production systems in Juruá Valley, Acre, Brazilian Amazon. Indian J Tradit Knowl [Internet]. 2016; 15(4): 619-24. Disponível em: https://nopr.niscpr.res.in/bitstream/123456789/35241/1/IJTK%2015(4)%20619-624.pdf
28. Jesus JCS, Oliveira E, Mattar EPL, Araújo ML, Siviero A. Sistemas produtivos utilizados no Vale do Juruá. In: Mattar EPL, Oliveira E, Santos RC, Siviero A, organizadores. Feijões do Vale do Juruá. Rio Branco: IFAC; 2017. p. 191-8.
29. Gomes Junior FG, Lima ER, Leal AJF, Matos FA, Sá ME, Haga KI. Teor de proteína em grãos de feijão em diferentes épocas e doses de cobertura nitrogenada. Acta Sci Agron [Internet]. 2005; 27(3) :455-9. Disponível em: https://periodicos.uem.br/ojs/index.php/ActaSciAgron/article/view/1409 DOI: https://doi.org/10.4025/actasciagron.v27i3.1409
30. Anjos FD, Vazquez-Anon M, Dierenfeld ES, Parsons CM, Chimonyo M. Chemical composition, amino acid digestibility, and true metabolizable energy of cowpeas as affected by roasting and extrusion processing treatments using the cecectomized rooster assay. J Appl Poult Res. 2016; 25(1): 85-94. doi:10.3382/japr/pfv069. DOI: https://doi.org/10.3382/japr/pfv069
31. Brasil. Resolução RDC nº 54, de 12 de novembro de 2012. Dispõe sobre o Regulamento Técnico sobre Informação Nutricional Complementar [Internet]. Disponível em: https://bvsms.saude.gov.br/bvs/saudelegis/anvisa/2012/rdc0054_12_11_2012.htm
Descargas
Publicado
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2025 Guiomar Almeida Sousa, Amauri Siviero, Eduardo Pacca Luna Mattar, Márcio Muniz Albano Bayma, Bruno Antônio Lemos de Freitas
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0.
Esta obra está licenciada bajo la licencia Creative Commons Atribución-NoComercial-SinObraDerivada 4.0 Internacional.
Los autores conservan los derechos de autor de las obras publicadas, que pueden reutilizarse y difundirse en otros medios, siempre que se cite la fuente original de la publicación (revista Biodiversidade Brasileira).
